Buradasınız

Anasayfa » Content

KÖK KANAL İRRİGASYONUNDA PROPOLİS İÇERİKLİ SOLÜSYONLAR İLE POTASYUM TİTANYUM FOSFAT LAZERİN ESCHERICHIA COLİ ÜZERİNE ETKİLERİ

EFFECTS ON ESCHERICHIA COLIOF SOLUTIONS CONTAINING PROPOLIS AND POTASSIUM TITANIUM PHOSPHATE LASER IN ROOT CANAL IRRIGATION

Journal Name:

  • Atatürk Üniversitesi Diş Hekimliği Fakültesi Dergisi

Publication Year:

  • 2011

Key Words:

Keywords (Original Language):

Author NameUniversity of AuthorFaculty of Author
Abstract (2. Language): 
Aim: In root canal irrigation, antimicrobial effects of propolis solutions (PS) in different concentrations on Escherichia coli were compared. In addition, after application of irrigation solutions to root canal, antimicrobial effect of Potassium Titanium Phosphate (KTP) laser against E. coli was evaluated. Material and Methods: In this study, forty single rooted new extracted mandibular premolar human teeth were used. They divided into five different groups: Group 1 Saline solution (Positive control), Group 2PS 5%, Group 3PS 10%, Group 4 PS 20%, Group 5Sodyum hipoklorit 2.5% (Negative control). Roots which lengths were predetermined were placed in glass bottles. Then, the roots were shaped using ProTaper files by crown down technique. The teeth in the glass bottles sterilized with ethylene dioxide were contaminated with E. Coli at laminar air flow. After then, 2 ml of irrigation solutions were used for each teeth. 24h growth were determined by evaluation of turbidity of test tubes. As a final step, KTP laser was applied to root canals to all groups and microbial growth were determined. The data were evaluated statistically using Kruskal Wallis, Mann Whitney-U, Chi square and Friedman tests. Results: While the effects of 10% and 20% propolis solutions were found statistically significant, 5% propolis solution was found statisticaly no significant. After all propolis solutions, using KTP laser was found statisticaly no significant. Conclusion: At high concentrations of propolis may indicate antimicrobial effect on E. Coli in root canals. KTP laser did not indicate enough antimicrobial effect against E. coli after application of irrigation solutions in root canals.
Bookmark/Search this post with
Abstract (Original Language): 
Amaç: Kök kanal irrigasyonunda, farklı konsantrasyonlarda hazırlanmış propolis solüsyonlarının (PS) Escherichia coli üzerine antimikrobiyel etkinliğinin karşılaştırılmasıdır. Ayrıca Potasyum Titanyum Fosfat (KTP) lazerin kök kanalında irrigasyon solüsyonlarından sonra uygulanmasının E. coli üzerine antimikrobiyel etkinliğinin değerlendirilmesi amaçlandı. Gereç ve Yöntem: Çalışmada, 40 adet yeni çekilmiş tek köklü mandibular küçük azı insan dişi kullanıldı. Beş farklı gruplara ayrıldı; Grup 1 serum fizyolojik (pozitif kontrol) Grup 2 PS %5, Grup 3 PS %10, Grup 4 PS %20, Grup 5 NaOCl %2,5 (negatif kontrol). Çalışma boyutları hesaplanan dişler lastik kapaklı cam şişelere yerleştirildi. ProTaper kök kanal aletleri ile crown-down tekniği kullanılarak prepare edildi. Etilen oksitle steril edilen cam şişelerdeki dişler laminar air flow'da E. coli ile kontamine edildi. Her diş için 2 ml irrigasyon solusyonu kullanıldı. 24 saat sonra bulanıklıklarına bakılarak sonuçlar değerlendirildi. Son aşama olarak tüm gruplara kök kanallarına KTP lazer uygulandı ve mikrobiyal üreme olup olmadığı belirlendi. Veriler istatistiksel olarak Kruskal Wallis testi, Mann Whitney-U testi, Ki-kare, Friedman testi ve Wilcoxon testleri ile değerlendirildi. Bulgular: Propolis %10 ve %20'lik solüsyonlarının etkinliği istatistiksel olarak önemli bulunurken (p<0.05), propolis %5'lik solüsyonu istatistiksel olarak önemsiz bulundu (p>0,05). Tüm propolis solüsyonlarından sonra KTP lazer kullanıldığında istatistiksel olarak önemsiz bulundu (p>0,05). Sonuç: Propolis yüksek konsantrasyonlarda kök kanallarında E. coli üzerine antibakteriyel etkinlik gösterebilir. KTP lazer, kök kanallarına irrigasyon solüsyonlarından sonra uygulandığında E. coli 'ye karşı yeterli antimikrobiyel etki gösteremedi
FULL TEXT (PDF): 
PDF icon arastirmax-kok-kanal-irrigasyonunda-propolis-icerikli-solusyonlar-ile-potasyum-titanyum-fosfat-lazerin-escherichia-coli-uzerine-etkileri.pdf
  • 1
15-21
  • Turkish

REFERENCES

References: 

1. Fabricius L, Dahlen G, Sundqvist G, Happonen RP, Möller AJR. Influence of residual bacteria on periapical tissue healing after chemomechanical treatment and root filling of experimentally infected monkey teeth. Eur J Oral Sci 2006; 114 : 278-85.
2. Sjögren U, Figdor D, Persson S, Sundqvist G. Influence of infection at the time of root filling on the outcome of endodontic treatment of teeth with apical periodontitis. Int Endod J 1997; 30: 297-306.
3. Farber PA, Seltzer S. Endodotnic microbiology, I. Etiology. J Endod 1988; 14: 363-71.
4.
Küçüka
y K, Küçükay S. Endodontik mikrobiyoloji.
Oral 1992; 9(97): 6-10.
5. Harrison JW, Wagner GW, Henry CA. Comparison of the antimicrobial effectiveness of reguar and fresh scent Clorox. J Endod 1990; 16: 328-30.
6.
Hepşe
n İ F, Tilgen F, Er H. Propolis: Tıbbi özellikleri ve oftalmolojik kullanımı. Turgut Özal Merkezi Tıp Dergisi 1996; 3: 386-91.
7. Ikeno K, Ikeno T, Miyazawa C. Effects of propolis on dental caries in rats. Caries Res 1991; 25:
347-51.
8. Koo H, Rosalen PL, Cury JA, Park YK, Ikegaki M, Sattler A. Effect of Apis mellifera propolis from two Brazilian regions on caries development in desalivated rats. Caries Res 1999; 33: 393-400.
9. Bretz WA, Chiego DJ, Marducci MC, Cunha I, Custödio A, Shneider LGZ. Preliminary report on the effects of propolis on wound healing in the dental pulp. Naturrforsch 1998; 53: 1045-8.
19
Atatürk Üniv. Diş Hek. Fak. Derg.
J Dent
Fac Atatürk Uni
Cilt:21, Sayı: 1, Yıl: 2011, Sayfa: 15-21
HUBBEZOĞLU, ÖZAN,
SÜMER
10. Özan Ü, İ. Hubbezoğlu, Z. Sümer. Sodyum hipoklorit, klorheksidin ve propolis içerikli solüsyonların potasyum titanyum fosfat lazer ile birlikte kullanımlarının Candida albicans üzerine etkinliklerinin incelenmesi. Cumhuriyet Üniversitesi Dişhekimliği Fakültesi Dergisi 2009; 12(1): 33-38.
11. Kustarci A, Sumer Z, Altunbas D, Kosum S. Bactericidal effect of KTP laser irradiation against Enterococcus faecalis compared with gaseous ozone: an ex vivo study. Oral Surgery, Oral Medicine, Oral Pathology, Oral Radiology, and
Endodontology 2009; 107(5): 73-9.
12. Schoop U, Kluger W, Dervisbegovic S, Goharkhay K, Wernisch J, Georgopoulos A, Sperr W, Moritz A. Innovative Wavelengths in Endodontic Treatment. Lasers Surg Med1996; 38: 624-30.
13. Hubbezoğlu İ, Özan Ü, Sümer Z. Sodyum hipoklorit, klorheksidin ve propolis içerikli solüsyonların potasyum titanyum fosfat lazer ile birlikte kullanımlarının streptococcus mutans üzerine etkinliklerinin incelenmesi. Selçuk Üniversitesi Diş Hekimliği Fakültesi Dergisi 2009;
18(3): 281-287.
14.
Kapda
n A. Farklı kavite dezenfeksiyon yöntemlerinin steptekokus mutansa etkinliklerinin değerlendirilmesi ve kompomer restorasyonlarının mikrosızıntı ve bağlanma kuvvetlerine etkileri, Doktora Tezi, Cumhuriyet Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Sivas,
2009.
15. Koo H, Gomes BPFA, Rosalen PL, Ambrosano GMB, Park YK, Cury JA. In vitro antimicrobial activity of propolis and arnica montana against oral pathogens. Arch Oral Biol 2000; 45: 141-8.
16. Koo H, Vacca Smith AM, Bowen WH, Rosalen PL, Cury JA, Park YK. Effects of apis mellifera
propoli
s on the activities of streptococcal glucosyltransferases in solution and adsorbed onto saliva-coated hydroxyapatite. Caries Res
2000; 34: 418-26.
17. Koo H, Rosalen PL, Cury JA, Ambrosano GM, Murata RM, Yatsuda R, Ikegaki M, Alencar SM, Park YK. Effect of a new variety of Apis mellifera propolis on mutans streptococci. Curr Microbiol
2000; 41: 192-6.
18. Park YK, Koo H, Abreu JA, Ikegaki M, Cury JA, Rosalen PL. Antimicrobial activity of propolis on
oral microorganisms. Curr Microbiol 1998; 36:
24-8.
19. Koo H, Pearson SK, Scott-Anne K, Abranches J, Cury JA, Rosalen PL, Park YK, Marquis RE, Bowen WH. Effects of apigenin and tt-farnesol on glucosyltransferase activity, biofilm viability and caries development in rats. Oral Microbiol
Immunol 2002; 17: 337-43.
20. Garedewa A, Schmolza E, Lamprechtb I. Microbiological and calorimetric investigations on the antimicrobial actions of different propolis extracts: an in vitro approach. Thermochimica
Acta 2004; 422: 115-24.
21. Marcucci MC. Propolis: Chemical composition, biological properties and therapeutic activity.
Apidologie 1995; 26: 76-81.
22. Kujumgiev A, Tsvetkova I, Serkedjieva Yu, Bankova V, Christov R, Popov S. Antibacterial, antifungal and antiviral activity of propolis of different geographic origin. J Ethnopharmacol
1999; 64: 235-40.
23. Santos VR, Pimenta FJGS, Aguiar MCF, Carmo MAV, Naves MD, Mesquita RA. Oral Candidiasis treatment with brazilian ethanol propolis extract. Phytotherapy Research 2005; 19, 652-4.
24. Aliyazıcıoğlu Y, Değer O, Ovali E, Barlak Y, Hosver I, Tekelipğlu Y, Karahan SC. Effects of Turkish pollen and propolis extracts on respiratory burst for K-562 cell lines. Int Immunopharmacol 2005; 5: 1652-7.
25. Al-Shader A, Wallace J, Agarwal S, Bretz W, Baugh D. Effect of propolis on human fibroblasts from the pulp and periodontal ligament. J Endod
2004; 30: 359-61.
26. Ayhan H, Sultan N, Cirak M, Ruhi MZ, Bodur H. Antimicrobial effects of various endodontic irrigants on selected microorganisms. Int Endod J
1999; 32: 99-102.
27. D'Arcangelo C, Varvara G, De Fazio P. An evaluation of the action of different root canal irrigants on facultative aerobic-anaerobic, obligate anaerobic, and microaerophilic bacteria.
J Endod 1999; 25: 351-3.
28. Sassone LM, Fidel R, Fidel S, Vieira M, Hirata R . The influence of organic load on the antimicrobial activity of different concentrations of NaOCl and chlorhexidine in vitro. Int Endod J 2003; 36 (12):
848-52.
20
Atatürk Üniv. Diş Hek. Fak. Derg.
J Dent Fac Atatürk Uni
Cilt:21, Sayı: 1, Yıl: 2011, Sayfa: 15-21
HUBBEZOĞLU, ÖZAN,
SÜMER
29. Sassone LM, Fidel RA, Fidel SR, Dias M, Hirata RJ. Antimicrobial activity of different concentrations of NaOCl and chlorhexidine using a contact test. Braz Dent J 2003; 14 (2): 99-102.
30. Kujumgiev A, Tsvetkova I, Serkedjieva Yu, Bankova V, Christov R, Popov S. Antibacterial, antifungal and antiviral activity of propolis of different geographic origin. J Ethnopharma 1999;
64: 235-40.
31. Bankova V, Christov R, Popov S. Antibacterial activity of essential oils from Brazilian propolis, Fitoterapia 1999; 70: 190-3.
32.
Silic
i S. Propolisin bazı antimikrobiyel ve farmakolojik aktiviteleri üzerine bir araştırma. Zootekni Anabilim Dalı, Çukurova Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, 2003, Adana.
33. Moreno MI, Isla MI, Sampietro AR, Vattuone MA. Comparison of the free radical-scavenging activity of propolis from several regions of Argentina. J Ethnopharmacol 2000; 71:109-14.
34. Sforcin JM, Fernandes JR A, Lopes CAM, Bankova V, Funarı
SRC
. Seasonal effect on Brazilian propolis antibacterial activity. J Ethnopharmacol 2000; 73: 243-9.
35. Kartal M, Yıldız S, Kaya S, Kurucu S, Topçu G. Antimicrobial activity of propolis samples from two different regions of Anatolia. J Ethnopharmacol 2003; 86: 69-73.
36. Stepanovic S, Antic N, Dakic I, Svabic-Vlahovic M. In vitro antimicrobial activity of propolis and synergism between propolis and antimicrobial drugs. Microbiol Res 2003; 158: 353-7.
37. Kimura Y, Arrastia-Jitosho AMA, Wilder-Smith P. Thermal, microstructural and physicochemical effects of nanosecond pulsed Nd: YAG laser irradiation on dentin. Laser Life Sci 1998; 8: 37¬50.
38. Kimura Y, Wilder-Smith P, Arrastia-Jitosho AMA, Liaw L-HL, Matsumoto K, Berns MW. Effects of nanosecond pulsed Nd: YAG laser irradiation on dentin resistance to artificial caries-like lesions.
Lasers Surg Med 1997; 20: 15-21.

Thank you for copying data from http://www.arastirmax.com