Buradasınız

Anasayfa » Content

Tavşan Ağız Mukozasında Mast Hücrelerinin Dağılımı

Distribution of mast cells in the rabbit oral mucosa

Journal Name:

  • İnönü Üniversitesi Tıp Fakültesi Dergisi

Publication Year:

  • 1995

Key Words:

Keywords (Original Language):

Author NameUniversity of AuthorFaculty of Author
Abstract (2. Language): 
Mast cells were identified by light microscopy in various oral mucosal sites (tongue, cheek, palate, gingiva) of the rabbits. Materials were fixed in Camoy, IFAA, formalin solutions and embedded in paraffin. Four consecutive sections were taken from each sample. The first section was stained by Crossmann's triple staining method, the second and third with toluidine blue, for 1 minute and 7 days and tie last section was double stained in astra blue safranine. Mast cells in these sections were counted by using an ocular micrometer and for each field mast cell population is calculated. Statistical comparisons were made for each fixation and staining method combination. Mast cells were not identified in formalin fixed sections but were shown with toluidine blue after a seven day staining period and astra blue safranine. The average mast cell numbers were compared according to the fixation and staining methods. The sections fixed in Camoy solution and stained with toluidine blue for 7 days were demonstrated as the appropriate methods for identifying the rabbit oral mucosa mast cells. There was no statistical difference in the number of mast cells between the various sites of oral mucosa in Camoy fixed sections. However, in IFAA fixed sections there were more mast cells observed in gingiva than the other sites, either with toluidine blue stain or with astra blue/safranine stain.
Bookmark/Search this post with
Abstract (Original Language): 
Tavşan ağız mukozasının değişik bölgelerindeki (dil, yanak, damak, dişeti) mast hücreleri ışık mikroskobu düzeyinde incelendi. Materyaller Kamoy, izotonik formol asetik asit (İFAA) ve formalin solüsyonlarında tesbit edildi. Hazırlanan blokların herbirinden dört seri kesit alındı. Birinci kesit Crossmann'ın üçlü boyama metodu ile, ikinci ve üçüncü kesitler toluidine blue ile (ikinci kesit bir dakika, üçüncü kesit yedi gün süreyle), dördüncü kesit astra blue/safranin ile ardışık olarak boyandı. Bu kesitlerdeki mast hücreleri oküler mikrometre yardımıyla sayılarak her bölgeye ait mast hücre yoğunluğu saptandı. Her bir fıksatif ve boya kombinasyonuna ait değerler birbirleriyle istatistiksel yönden karşılaştırıldı. Kullanılan fiksatiflerden formalin ile istenilen başarı sağlanamazken diğer iki fiksatifle tesbit edilen kesitlerde mast hücreleri gözlenebildi. Uzun süreli TB ve astra blue/safranin (ABS) ile boyanan kesitlerde mavi renkte boyanan mast hücreleri gözlendi. Uygulanan yöntemlerle elde edilen ortalama mast hücre sayıları birbirleriyle karşılaştırıldığında en iyi sonucun Kamoy solüsyonu ile tesbit edilen kesitlerde elde edildiği saptandı. Bu yöntemle fiksasyondan sonra TB ile 7 gün boyamanın tavşan ağız mukozasındaki mast hücrelerinin incelenmesi için uygun bir yöntem olduğuna karar verildi. Kamoy solüsyonu ile tesbit edilen kesitlerde ağız mukozasının değişik bölgeleri arasında içerdikleri ortalama mast hücre sayısı bakımından istatistiksel bir farklılık bulunamadı. İFAA solüsyonunda tesbit edilenlerde ise hem TB hem de ABS ile boyanan kesitlerde dişeti mukozasında diğer bölgelerden daha fazla mast hücresi bulunduğu saptandı.
FULL TEXT (PDF): 
PDF icon arastirmax-tavsan-agiz-mukozasinda-mast-hucrelerinin-dagilimi.pdf
  • 3
258-267
  • Turkish

REFERENCES

References: 

1. Siraganian RP. Mast cells and basophils. In: Gallin Jl, Goldstein İM, Snyderman R, editor(s). Inflammation: Basic Principles and Clinical Correlates. New York: Raven Press, 1988: 513-542.
2. Paker
Ş
. Histoloji; 2. baskı. Bursa: Uludağ Üniversitesi Basımevi. 1993: 114-116.
3. Fawcett DW. A Textbook of Histology. 11th ed. Philadelphia: WB Saunders Co, 1986: 160-164.
4. Dvorak AM. Human Mast Cells. Adv. Anat. Embryol. Cell. Biol. 1989; 114: 1-107.
5. Pearce FL. On the heterogeneity of mast cells. Pharmacology 1986; 32: 61-71.
6. Leeson TS, Leeson CR, Papara AA. Text/atlas of histology. Philadelphia: WB Saunders Co. 1988: 394-418.
7. Parwaresch MR, Horny HP, Lennert K. Tissue mast cells in health and disease. Pathol Res Pract 1985; 179: 439-461.
8. Strobel S, Miller HRP, Ferguson A. Human intestinal mucosal mast cells: evaluation of fixation and staining techniques. J Clin Pathol 1981; 34: 851¬858.
9. Enerback L. Mast cells in the rat gastrointestinal mucosa 1. Effects of fixation. Acta Path et Microbiol Scandinav 1966a; 66: 289-302.
10. Miller HRP, Walshaw R. Immune reactions in mucous membranes IV. Histochemistry of intestinal mast cells during helminth expulsion in the rat. Am J Pathol 1972; 69(1): 195-205.
11. Wingren U, Enerback L. Mucosal mast cells of the rat intestine: a re-evaluation of fixation and staining properties, with special reference to protein blocking and solubility of the granular glycosaminoglycan. Histochem J 1983; 15: 571-587.
12. Katz HR, Kaye RE, Austen KF. Mast cell biochemical and functional heterogeneity. Transplant Proc 1991; 23(6): 2900-4.
13. Drake-Lee AB, Price J. A review of the morphology of human nasal mast cells as studied by light and electron microscopy. Rhinology 1992; 30: 229-239.
14. Stevens RL, Lee TDG, Seldin DC, Austen KF, Befus AD, Bienenstock J. Intestinal mucosal mast cells from rats infected with Nippostrongylus brasiliensis contain protease-resistant chondroitin sulfate di-B proteoglycans. J Immunol 1986; 137(1): 291-5.
15. Marshall JS, Bienenstock J. Mast cells. Springer Semin Immunopathol 1990; 12: 191-202.
16. Enerback L. Mast cells in rat gastrointestinal mucosa. 2. Dye-binding and metachromatic properties. Acta Path et Microbiol Scandinav 1966b; 66: 303-12.
17. Jontell M, Hansson HA, Nygren H. Mast cells in oral lichen planus. J Oral Pathol 1986; 15: 273-275.
18. Angelopoulos AP. Studies of mast cells in the human gingiva. I. Morphology. J Periodont Res 1973;8:28-36.
19. Ruokonen H, Hietanen J, Malmström M, Sane J, Hayrinen-lmmonen R, Hukkanen M et al. Peripheral nerves and mast cells in normal buccal mucosa. J Oral Pathol Med 1993; 22: 30-34.
20. Cobb CM, Heneghan JB, LeBlanc DM, Davis MJ. Mast cell distribution in oral tissues of germ-free vs. conventional beagle dogs. J Periodontol 1976; 47: 230-235.
21. Coleman EJ. Mast cell population density in hamster gingiva. J Periodontal Res 1974; 9: 188-192.
22. Stoncius LV, Ashrafi SH, Meyer J. Ultrastructure of mast cells in the hyperplastic buccal mucosa of the zinc-deficient rat. J Oral Pathol 1985; 14: 375-382.
23. Thomas CJ. Mast cells, elastic fibres and the lamina propria in the hard palate of the rat. J Biol Buccale 1988; 16(2): 101-107.
24. Matsson L. Mast cell heterogeneity in various oral mucosal sites in the rat. Arch Oral Biol 1992; 37(6): 445-45025. Oliani SM, Vugman I, Jamur MC. Ultrastructural similarity between bat and human mast cell secretory granules. Int Arch Allergy Immunol 1993; 100: 230-233.
26.
Rağbetl
i MÇ, Ozyazıcı A, Bilgiç S, Kaplan S, Çiftçi N. Mast hücrelerinin ışık mikroskobu düzeyinde incelenmesi. Ondokuz Mayıs Üni Tıp Fak Derg 1990; 7(2): 159-170.
27. Crossman G. A modification of Mallory's connective tissue stain with a discussion of the principles involved. Anat Rec 1937; 69: 33-8.
28. Sümbüloğlu K, Sümbüloğlu V. Biyoistatistik. Ankara: Özdemir Yayıncılık. 1994; 76-95.
29. Crow J, More L, Howe S. The mast cells of the human uterus. APMIS 1988; 96: 921-6.
30. Majeed SK. Mast cell distribution in rats. Arzneim -Forsch/Drug Res 1994; 44(1),3: 370-4.

Thank you for copying data from http://www.arastirmax.com