Buradasınız

Anasayfa » Content

POMZA TOZUNDAN KAYNAKLANAN ÇAPRAZ BULAŞMANIN ÖNLENMESİ ÜZERİNE MİKRODALGA ENERJİSİ VE DEZENFEKTAN SOLÜSYONLARIN ETKİSİ

THE EFFECTS OF MICROWAVE ENERGY AND DISINFECTANT SOLUTIONS ON THE CROSS-CONTAMINATION WHICH ARISES FROM DENTAL PUMICE

Journal Name:

  • İstanbul Üniversitesi Diş Hekimliği Fakültesi Dergisi

Publication Year:

  • 1994

Key Words:

Keywords (Original Language):

Author NameUniversity of AuthorFaculty of Author
Abstract (2. Language): 
This investigation has been carried out for determining the microorganism types in dental pumice specimens which were collected from dental laboratories and evaluating the efficiency of microwave energy for sterilization and the efficiency of three disinfectant solutions Steranios concentre (10 %), Cidex (2 %), Gigasept (5 %) for disinfection of dental pumice. In this study, dental pumice specimens were divided into two main groups. One of them was unused dental pumice which was contaminated with standard strains and the other one was used dental pumice which was collected from dental laboratories. Both of the groups were exposed to microwave energy for 1,3,5,10,15 and 20 minutes for sterilization. Also, three disinfectant solutions were added into the both groups of dental pumice according to manufacturer's recommended concentrations and time for disinfection. As a result, exposure of longer than 20 minutes was necessary for sterilization of dental pumice in microwave owen. Disinfectant solutions of Steranios concentre (10 %) and Cidex (2 %) showed the same efficiency against the bacteries in unused dental pumice which was contaminated with standard strains. But, Gigasept (5 %) wasn't able to kill Pseudomonas aeruginosa (NCTC 6749). At the same time, all disinfectant solutions weren't able to be efficient for Bacillus subtilis (KUEN 1481). Steranios concentre (10 %) and Cidex (2 %) showed 90 % and 80 % efficiency against all microorganisms but Gigasept (5 %) wasn't able to show the same efficiency on used dental pumice which was collected from dental laboratories.
Bookmark/Search this post with
Abstract (Original Language): 
Araştırmamız, protez laboratuvarlarından toplanan pomza tozu örnekleri içerisindeki mikroorganizma türlerini belirlemek ve pomza tozunun sterilizasyonunda mikrodalga enerjisinin; dezenfeksiyonunda ise, üç dezenfektan solüsyon [Steranios concentre (%10), Cidex (%2), Gigasept (%5)]'un etkinliğini değerlendirmek amacıyla düzenlenmiştir. Bu çalışmada, standart bakteri suşları bulaştırılan kullanılmamış pomza tozu örnekleri ve laboratuvarlardan toplanan kullanılmış pomza tozu örnekleri adı altında iki ayrı grup düzenlenmiştir. Her iki grupta yer alan pomza tozu örneklerinin sterilizasyonunda; 1,3,5,10,15 ve 20 dakikalık sürelerle mikrodalga enerjisi, dezenfeksiyonunda ise, temas süreleri ve konsantrasyonları üretici firma tarafından belirtilen şekilde hazırlanmış olan üç ayrı dezenfektan solüsyon kullanılmıştır. Sonuç olarak, sterilizasyon için, pomzanın mikrodalga fırınında 20 dakikadan fazla bir süre tutulmasının gerekli olduğu bulunmuştur. Dezenfeksiyon için ise, standart bakteri suşlan bulaştırılmış kullanılmamış pomza tozundaki bakterilere karşı Steranios concentre (%10) ve Cidex (%2) aynı etkiyi gösterirlerken, Gigasept (%5), Pseudomonas aeruginosa (NCTC 6749)'yı öldürememiştir. Her üç dezenfektan solüsyon da sporlu bakteri Bacillus subtilis (KUEN 1481)'e etkili olamamıştır. Laboratuvarlardan toplanan kullanılmış pomza tozu örneklerinin dezenfeksiyonunda ise, Steranios concentre (%10) ve Cidex (%2), tüm mikroorganizmalar üzerinde % 90 ve % 80 etkinlik gösterirlerken, Gigasept (%5) etkili olamamıştır.
FULL TEXT (PDF): 
PDF icon arastirmax-pomza-tozundan-kaynaklanan-capraz-bulasmanin-onlenmesi-uzerine-mikrodalga-enerjisi-dezenfektan-solusyonlarin-etkisi.pdf
  • 3
237
244
  • Turkish

REFERENCES

References: 

1.
Akşi
t K S , Ünalan F, Gürler B, Nakipoğhı Y. Mikrodalga enerjisi ve dezenfektan solüsyonlarla çapraz irıfeksiyonun önlenmesine ilişkin bir ön çalışma. ANKEMDerg 1993 7:306-12.
2. Boucher RMG Advances in sterilization techniques: State of (he art and recent breakthroughs. Am J Hosp Pharm 1972:29 661-72.
3. Council on Dental Materials Instruments and Equipment, Council on Dental Practice Council on Dental Therapeutics. Infection control recommendations for the dental office and the dental laboratory. J Am Dent Assoc 1988:116:241-8.
4. Davis D R, Curtis D A, White J M. Microwave irradiation of contaminated dental casts. Quint In11989: 20: 583-5.
5. Fisher W T, Chandler H T, Brudvik J S. Reducing laboratory contamination. J ProsthetDent 1972; 27: 221- 5.
6. Foster H L. The use of microwave sterilization and pasturi-zation for barrier sustained animal colonies. Lab Anim Care 1968: 75: 356-60.
7. Goldblith S A, Wang DI G. Effect of microwaves on Escherichia coli and Bacillus subtilis. ApplMicrobiol 1967:15: 1371¬5.
8. Hume W R, Makinson O F. Microwave radiation in dental sterilizing. J Dent Res 1975: 54: 652 (Abstract).
9. Hume W R, Makinson O F. Sterilizing dental instruments: Evaluation of lubricating oils and microwave radiation. Oper Dent 1978: 3: 93-102.
10. Kahn RC, Lancaster MV, Kate W Jr. The microbiologic cross-contamination of dentai prostheses. J Prosthet Dent 1982: 47: 556-9.
11. Katberg JW. Cross-contamination via the prosthodontic laboratory. / Prosthet Dent 1974: 32: 412-9.
12. Larato DC. Disinfection of pumice. J Prosthet Dent 1967:18: 534-5.
13. Miller RL, Burton WE, Spore RW. Aerosols produced by dental instrumentation. First International Symposium on Aerobiology, Berkeley 1963.
14. Miller RE, Micik RE. Air pollution and its control in the dental office. Dent Clin N Amer. 1978: 22: 453.
15. Nicholson RJ, Stark MM, Scott HE. Calculus and stain removal from acrylic resin dentures. J Prosthet Dent 1968: 20: 326.
16. Rohrer MD, Bulard RA. Microwave sterilization. J Am Dent Assoc 1985:110: 194-8.
17. Rudd RW, Senia ES, McCieskey FK, Adams ED. Sterilization of complete dentures with sodium hypochlorite. J Prosthet Dent 1984: 52:318-21.
18. Runnels RR. An overview of infection control in dental practice. J Prosthet Dent 1988: 59: 625-9.
19. Sanborn MR, Wan SK, Bulard R. Microwave sterilization of plastic tissue culture vessels for reuse. Appl Environ Microbiol 1982: 44: 960-4.
20. Seals RR, Funk JJ. Minimizing cross-contamination from dental pumice. J Prosthet Dent 1992: 67: 425-6.
21. Senia ES, Marrano RV, Mitchell JL, Lewis AG, Thomas L. Rapid sterilization of gutta-percha cones with 5.25 sodium hypochlorite/£«rforfl975:1: 136.
244
AkşitK. S. Unalan F. Gürler B. Nakipoğlu Y. Beyli S. M.
22.
Şahma
h MS, Koksal İ, Şahin E. Tam ve bölümlü protezlerin sodium hypochlorite ile sterilizasyonu. Hacettepe Diş Hek. Fak. Derg. 1988:12: 58-62.
23.
Tunce
r N, Külekçi G, Tüfekçioğtu B, Aral E, İnanç D. Alçı modellerle çapraz bulaşmanın önlenmesinde mikrodalga sterili-zasyonunun etkinliği. DişHekKli 1990: 3:45-7.
24. Vig RG. Reducing laboratory aerosol contamination. J Prosthet Dent 1969: 22:156.
25. Williams HN, Falkner WA Jr, Hasler JF. Acinetobacter contamination of laboratory dental pumice. / Dent Res 1983: 62:1073.
26. Williams HN, Falkner WA, Smith AG, Hasler JF. The isolation of fungi from laboratory dental pumice. J Prosthet Dent 1986:56: 737-40.
27. Young SK, Graves DC, Rohrer MD, Bulard RA. Microwave sterilization of nitrous oxide nasal hoods contaminated with virus. Oral Surg Oral Med Oral Pathol 1985:60: 581-5.

Thank you for copying data from http://www.arastirmax.com